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脂质组学分析

脂质不仅是膜的组成和能量储存形式,也作为信号分子参与炎症、胰岛素抵抗、铁死亡和肿瘤代谢。脂质组学在一次分析中测定上百到上千种脂质,主要类别包括甘油磷脂(PC、PE、PI、PS 等)、鞘脂(神经酰胺、鞘磷脂)、甘油酯(TG、DG)、固醇酯和游离脂肪酸。与一般代谢组相比,脂质结构高度相似、同分异构体多,鉴定需要依靠特征碎片离子并区分注释层级,定量需要每个类别的内标。分析结果通常在三个层面解读:单个脂质分子、脂质类别总量,以及脂肪酰链长度与不饱和度的整体分布。

什么时候用

  • 高脂饮食、肥胖或脂肪肝模型中比较肝脏或血浆脂质谱
  • 研究铁死亡时观察含多不饱和脂肪酸磷脂的变化
  • 评估药物或基因敲除对鞘脂和神经酰胺代谢的影响
  • 血浆脂质与心血管或代谢疾病风险关联的队列研究
  • 细胞膜脂组成变化与膜流动性、信号转导的关系研究

不适合的情况

  • 需要确定双键位置或 sn 位置:常规 LC-MS/MS 一般无法区分,需专门的碎裂技术
  • 只关心少数几个已知脂质的准确浓度:靶向 MRM 定量更合适
  • 用一般代谢组的水相提取样本做脂质分析:大部分脂质未被提取

需要准备的数据

质谱原始数据
正负离子模式的 LC-MS/MS 数据,记录色谱柱类型(C18、C30 或 HILIC)和采集方式
鉴定与峰面积表
LipidSearch、MS-DIAL 等软件输出,需含脂质名、加合离子、保留时间、碎片证据等级和各样本峰面积
内标信息
加入的各类别内标名称、浓度和加入量;最好覆盖主要脂质类别,用于按类别校正和半定量
样本与质控信息
分组、组织重量或蛋白量、上机顺序,以及混合 QC 样本和提取空白的位置

分析步骤

  1. 1

    提取与上机设计

    常用 Folch、Bligh-Dyer 或 MTBE 法提取,提取前加入内标。上机顺序随机化,定期插入混合 QC 和空白。QC 在 PCA 中聚在一起,说明全程仪器状态稳定。

  2. 2

    峰提取与鉴定

    用 LipidSearch 或 MS-DIAL 进行峰提取、加合离子识别和碎片匹配。检查主要类别的特征碎片,例如正离子模式下 PC 和 SM 的磷酸胆碱头基碎片 m/z 184.07,PE 的中性丢失 141。

  3. 3

    结果核查与去冗余

    同一脂质常以多种加合离子出现,需要合并或只保留一个代表离子;同时剔除源内碎裂产物,如由 PC 产生的假 LPC 峰。保留时间应随链长和双键数呈规律变化,不符合规律的注释需要复查。

  4. 4

    内标定量与归一化

    用同类别内标的峰面积比乘以内标浓度得到半定量浓度,再按组织重量、蛋白量或细胞数归一化。比较内标在全部样本中的变异,变异过大的样本可能存在提取或进样问题。

  5. 5

    质控过滤

    计算每个脂质在 QC 样本中的 CV,常见做法是去除 CV 超过 20% 到 30% 的脂质,并去除在空白中信号高的特征。上机时间长时,需先做信号漂移校正。

  6. 6

    统计与差异分析

    对数转换后做 PCA 和 PLS-DA 或 OPLS-DA 观察组间分离,用 t 检验或 limma 筛选差异脂质并做 FDR 校正。多变量模型需做置换检验,防止过拟合。

  7. 7

    类别与结构特征分析

    把差异结果汇总到脂质类别、总碳数和总双键数层面,例如比较各类别总量、TG 链长分布和 PUFA 磷脂比例。也可用 LION 或 lipidr 做脂质集富集,判断变化是否集中在某类结构特征。

关键参数与决策

色谱分离方式

反相色谱按疏水性分离,同一类别中不同链长和不饱和度的分子能分开;HILIC 按头基极性分离,同类脂质共流出,便于用同类内标校正。按研究重点选择,二者也可互补。

注释层级

只确认类别和总碳数、双键数时写作物种水平,如 PC 34:1;能从碎片确认两条酰链时写作分子种水平,如 PC 16:0_18:1;sn 位置确定后才用斜线。报告时不要超出证据。

加合离子选择

不同类别的优势离子不同,如 TG 正离子模式常见 [M+NH4]+,PC 在负离子模式常以甲酸或乙酸加合离子出现。为每个类别固定一种主定量离子,避免同一脂质重复计数。

QC CV 阈值

阈值越严保留的脂质越可靠但数量越少。常见经验范围是 20% 到 30%,低丰度脂质整体 CV 较高,可按丰度分层评估过滤的影响。

常见错误

  • 忽视 II 型同位素重叠:多一个双键的脂质的 M+2 同位素峰与目标脂质质量接近,未校正会高估饱和度更高的那一个。
  • 接受软件给出的分子种水平注释而不核对碎片:缺少酰链碎片证据时,PC 16:0_18:1 这样的注释并不成立。
  • 没有内标就跨类别比较峰面积:不同类别离子化效率差异很大,峰面积大小不代表含量高低。
  • 把源内碎裂产物当作内源脂质:PC 在离子源中丢失脂肪酰链会形成与 LPC 同质量的峰,若与 PC 同时出峰需排除。
  • 样本处理用塑料管长时间接触有机溶剂:塑料中的增塑剂和聚合物会引入大量干扰峰,提取空白中可以看到。

结果怎么看

脂质类别组成图

以堆叠柱状图展示各组主要脂质类别的总量或占比。某一类别整体变化,例如神经酰胺升高,比单个分子变化更有生物学解释力;如果所有类别同步升降,先检查归一化是否合适。

差异脂质火山图

每个点是一个脂质,横轴 log2 倍数变化,纵轴 -log10(FDR),点可按类别着色。显著点集中在同一类别时提示通路层面的变化;散布在各类别时,需结合富集分析判断是否有规律。

链长与不饱和度气泡图

横轴为总碳数,纵轴为总双键数,气泡大小和颜色表示倍数变化或显著性,常按类别分面展示。高双键数磷脂集中下降,可提示 PUFA 磷脂消耗,与脂质过氧化相关研究相呼应。

QC 样本 PCA 与 CV 分布

QC 样本在 PCA 中应紧密聚集于中心,CV 分布大部分低于设定阈值。QC 随上机顺序在主成分上漂移,提示需要信号漂移校正;QC 很分散时,组间差异结论不可靠。

和相近方法怎么选

脂质组学与非靶向代谢组

非靶向代谢组多用水相或混合提取,覆盖氨基酸、有机酸等极性小分子,脂质只是一部分,注释多停留在质量匹配。脂质组学用有机相提取,按类别碎片规则鉴定,并以类别内标定量,脂质覆盖和结构信息更完整。

LC-MS 与鸟枪法脂质组学

鸟枪法直接进样不经色谱,速度快、类别内标校正方便,但同分异构体和低丰度脂质易受离子抑制。LC-MS 先分离再检测,能区分更多同分异构体和低丰度分子,但通量较低、保留时间需要校准。

LipidSearch 与 MS-DIAL

LipidSearch 是 Thermo 的商业软件,与其仪器数据配合好,按碎片规则给出鉴定等级。MS-DIAL 免费、支持多厂商数据和 DIA 采集,内置较大的脂质谱图库。两者都需要人工核查碎片证据和保留时间规律。

常见问题

PC 34:1 和 PC 16:0_18:1 有什么区别?

PC 34:1 只说明是一种磷脂酰胆碱,两条酰链合计 34 个碳和 1 个双键,可能是多种组合。PC 16:0_18:1 进一步通过碎片确认了两条酰链分别为 16:0 和 18:1,但未确定哪条在 sn-1 位。只有确定 sn 位置时才写作 PC 16:0/18:1。

脂质组学一定要加内标吗?

做相对比较时,没有内标也可以比较同一脂质在不同组间的变化。但要估计浓度、比较不同类别总量或校正提取效率,就需要每个主要类别至少一个内标。常用氘代或奇数链脂质作为内标,因为它们在样本中天然含量极低。

LipidSearch 鉴定出的脂质都可信吗?

不一定。需查看其鉴定等级和碎片证据,去除只有一级质量匹配的条目,合并同一脂质的多个加合离子,检查保留时间是否符合链长和双键规律,并排除源内碎裂产物。核查后数量通常明显少于软件初始输出。

差异脂质怎么做富集分析?

KEGG 通路中脂质分子注释有限,直接做代谢通路富集意义不大。更常用的是脂质集富集:按类别、链长、不饱和度、细胞定位等脂质本体属性分组,用 LION 或 lipidr 等工具检验差异是否集中在某类特征上。

在 Codar 里怎么做

在 Codar 里提供 LipidSearch 或 MS-DIAL 导出的脂质鉴定与峰面积表、内标信息和样本分组后,会先确认注释层级、归一化方式和质控标准,再进行脂质组学分析:去冗余与质控、内标校正、差异脂质统计,以及类别、链长和不饱和度汇总。交付差异脂质表、类别组成图、火山图、链长气泡图、报告和可复现脚本。

可以这样提问
我有对照和高脂饮食小鼠各 8 只的肝脏脂质组 LipidSearch 结果,带内标,想找差异脂质并看 TG 链长和不饱和度怎么变
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